ДОСЛІДЖЕННЯ ВПЛИВУ ПРОБІОТИКУ НА МІКРОБІОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКУ ПОРОСЯТ

Ключові слова: поросята, пробіотики, мікрофлора кишечника, Lactobacillus sp., Bifidobacterium sp.

Анотація

Важливим фактор поросят є підтримка імунітету з рахунок впливу на мікрофлору кишечника та неспецифічний імунітет. Найбільш відповідальний період для поросят одразу після народження, коли тільки відбувається формування морфологічної будови кишечника (висота крипт) та мікрбіому. Дослідження виконували у ДП «ДГ Інституту сільського господарства Північного Сходу» НААН України у березні 2022 року. Порода свиней –Велика біла + Ландрас. Кількість Lactobacillus sp. у вмісті кишечнику поросят дослідних груп була більше з B. coagulans на 200,0 %, з B. mucilaginosus – на 379,0 % з B. megaterium – на 228,7 %, з B. pumilus – на 17,8 %, з B. amyloliquefaciense – на 26,0 % порівняно з контролем. Bifidobacterium sp. у всіх дослідних групах була у межах 107, порівняно з контрольною 105. Кількість Clostridiums p. з B. coagulans була менше на 93,3 %, з B. mucilaginosus – на 66,6 %, з B. megaterium, B. pumilus та B. amyloliquefaciense – на 33,3 % у порівняно зконтрольною. Escherichia coli, яка має гемолітичну активність виділяли з фекалій поросят з B. pumilus, B. amyloliquefaciense та контрольної груп. Кількість Еscherichia coli виділялась в меншій кількості у першій дослідній групі на 86,95 %, другій – на 88,0 %, третій – на 76 %, четвертій – на 65,2 %, п’ятій – на 34,78 %, порівняно з контролем. Бактерії родів Salmonella та Pseudomonas у фекальних масах поросят не виділяли. Кількість дріжджоподібних грибів у зразках дослідних та контрольної групи поросят були однакові менше 10 в 1см3. Enterobacteriaceae виділяли від поросят дослідних груп на 98 % менше, порівняно з контролем.Стафілококи виділяли у першій, другій, четвертій та п’ятій дослідних групах в однаковій кількості і менше на 85,7 %, порівняно з контролем. Дослідженнями встановлено, що застосування пробіотичних штамів Bacillus coagulans, Bacillus megaterium та Bacillus mucilaginosus, позитивно вплинуло на вміст корисної мікрофлори у кишечнику поросят та пригнічували ріст умовно-патогенної мікрофлори.

Посилання

1. Babot, J. D., Argañaraz-Martínez, E., Saavedra, L., Apella, M. C., & Chaia, A. P. (2018). Compatibility and safety of five lectin-binding putative probiotic strains for the development of a multi-strain protective culture for poultry. Beneficial microbes, 9(6), 927–935. https://doi.org/10.3920/BM2017.0199
2. Bajagai, Y. S., Klieve, A. V., Dart, P. J., & Bryden, W. L. (2016). Probiotics in animal nutrition: production, impact and regulation. FAO https://www.fao.org/documents/card/en?details=e6232d34-e38e-4b4c-9a45-70fa75f7da23/
3. Canibe, N., Højberg, O., Kongsted, H., Vodolazska, D., Lauridsen, C., Nielsen, T. S., & Schönherz, A. A. (2022). Review on Preventive Measures to Reduce Post-Weaning Diarrhoea in Piglets. Animals : an open access journal from MDPI, 12(19), 2585. https://doi.org/10.3390/ani12192585
4. Chang, C. H., Teng, P. Y., Lee, T. T., & Yu, B. (2019). The effects of the supplementation of multi-strain probiotics on intestinal microbiota, metabolites and inflammation of young SPF chickens challenged with Salmonella enterica subsp. enterica. Animal science journal = Nihon chikusan Gakkaiho, 90(6), 737–746. https://doi.org/10.1111/asj.13205
5. Daudelin, J. F., Lessard, M., Beaudoin, F., Nadeau, E., Bissonnette, N., Boutin, Y., Brousseau, J. P., Lauzon, K., & Fairbrother, J. M. (2011). Administration of probiotics influences F4 (K88)-positive enterotoxigenic Escherichia coli attachment and intestinal cytokine expression in weaned pigs. Veterinary research, 42(1), 69. https://doi.org/10.1186/1297-9716-42-69
6. Kreuzer-Redmer, S., Bekurtz, J. C., Arends, D., Bortfeldt, R., Kutz-Lohroff, B., Sharbati, S., Einspanier, R., & Brockmann, G. A. (2016). Feeding of Enterococcus faecium NCIMB 10415 Leads to Intestinal miRNA-423-5p-Induced Regulation of Immune-Relevant Genes. Applied and environmental microbiology, 82(8), 2263–2269. https://doi.org/10.1128/ AEM.04044-15
7. Kritas, S. K., Marubashi, T., Filioussis, G., Petridou, E., Christodoulopoulos, G., Burriel, A. R., Tzivara, A., Theodoridis, A., & Pískoriková, M. (2015). Reproductive performance of sows was improved by administration of a sporing bacillary probiotic (Bacillus subtilis C-3102). Journal of animal science, 93(1), 405–413. https://doi.org/10.2527/jas.2014-7651
8. Kwoji, I. D., Aiyegoro, O. A., Okpeku, M., & Adeleke, M. A. (2021). Multi-Strain Probiotics: Synergy among Isolates Enhances Biological Activities. Biology, 10(4), 322. https://doi.org/10.3390/biology10040322
9. Liu, H., Wang, S., Zhang, D., Wang, J., Zhang, W., Wang, Y., & Ji, H. (2020). Effects of dietary supplementation with Pediococcus acidilactici ZPA017 on reproductive performance, fecal microbial flora and serum indices in sows during late gestation and lactation. Animal bioscience, 33(1), 120–126. https://doi.org/10.5713/ajas.18.0764
10. Nam, N. H., Truong, N. D., Thanh, D. T. H., Duan, P. N., Hai, T. M., Dao, B. T. A., & Sukon, P. (2022). Bacillus subtilis QST 713 Supplementation during Late Gestation in Gilts Reduces Stillbirth and Increases Piglet Birth Weight. Veterinary medicine international, 2022, 2462241. https://doi.org/10.1155/2022/2462241
11. Poulsen, A. R., Jonge, N., Nielsen, J. L., Højberg, O., Lauridsen, C., Cutting, S. M., & Canibe, N. (2018). Impact of Bacillus spp. spores and gentamicin on the gastrointestinal microbiota of suckling and newly weaned piglets. PloS one, 13(11), e0207382. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0207382
12. Saladrigas-García, M., Solà-Oriol, D., López-Vergé, S., D'Angelo, M., Collado, M. C., Nielsen, B., Faldyna, M., Pérez, J. F., & Martín-Orúe, S. M. (2022). Potential effect of two Bacillus probiotic strains on performance and fecal microbiota of breeding sows and their piglets. Journal of animal science, 100(6), skac163. https://doi.org/10.1093/jas/skac163
13. Tian, M., Li, Q., Zheng, T., Yang, S., Chen, F., Guan, W., & Zhang, S. (2023). Maternal microbe-specific modulation of the offspring microbiome and development during pregnancy and lactation. Gut microbes, 15(1), 2206505. https://doi.org /10.1080/19490976.2023.2206505
14. Wang, Y. C., Hu, S. Y., Chiu, C. S., & Liu, C. H. (2019). Multiple-strain probiotics appear to be more effective in improving the growth performance and health status of white shrimp, Litopenaeus vannamei, than single probiotic strains. Fish & shellfish immunology, 84, 1050–1058. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2018.11.017 15. Zhang, Q., Li, J., Cao, M., Li, Y., Zhuo, Y., Fang, Z., Che, L., Xu, S., Feng, B., Lin, Y., Jiang, X., Zhao, X., & Wu, D. (2020). Dietary supplementation of Bacillus subtilis PB6 improves sow reproductive performance and reduces piglet birth intervals. Animal nutrition (Zhongguo xu mu shou yi xue hui), 6(3), 278–287. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2020.04.002
Опубліковано
2023-11-21
Як цитувати
Шкромада, О. І., & Грек, Р. В. (2023). ДОСЛІДЖЕННЯ ВПЛИВУ ПРОБІОТИКУ НА МІКРОБІОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКУ ПОРОСЯТ. Вісник Сумського національного аграрного університету. Серія: Ветеринарна медицина, (3(62), 113-117. https://doi.org/10.32782/bsnau.vet.2023.3.16